1101无菌检查法对比表（2025版药典 VS 2020版药典）

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《中国药典》1101 无菌检查法：2020 年版 VS 2025年版对比表

标题

2020年版 2025年版对比分析

前言

无菌检查应在无菌条件下进行，试验环境必须达到无菌检查的要求，检验全过程应严格

遵守无菌操作，防止微生物污染，防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检出。单

向流空气区域、工作台面及受控环境应定期按医药工业洁净室（区）悬浮粒子、浮游菌

和沉降菌的测试方法的现行国家标准进行洁净度确认。隔离系统应定期按相关的要求进

行验证，其内部环境的洁净度须符合无菌检查的要求。日常检验需对试验环境进行监测

。

无菌检查应在无菌条件下进行，试验环境必须达到无菌检查的要求，检验全过程应严格

遵守无菌操作，防止微生物污染，防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检出。单

向流空气区域、工作台面及受控环境应定期确认。隔离系统应定期按相关的要求进行验

证，其内部环境的洁净度须符合无菌检查的要求。日常检验需对试验环境进行监测与控

制。

1.标准化简化：25版不再指定具体测

试方法，可能默认沿用现有标准或允

许灵活选择方法。删除具体测试方

法描述，简化为 “定期确认 ”。

2.强化过程控制：25版强调不仅要监

测环境，还需实时控制环境参数，确

保持续符合无菌要求。新增“与控制

”，即“日常检验需对试验环境进行监

测与控制”。

培养基硫乙醇酸盐流体培养基主要用于厌氧菌的培养，也可用于需氧菌的培养；胰酪大豆胨液

体培养基用于真菌和需氧菌的培养。

硫乙醇酸盐流体培养基主要用于厌氧菌的培养，也可用于需氧菌的培养；胰酪大豆胨液

体培养基用于真菌和需氧菌的培养。 N.A

培养基的制备

及培养条件

培养基可按以下处方制备，亦可使用按该处方生产的符合规定的脱水培养基或商品化的

预制培养基。配制后应采用验证合格的灭菌程序灭菌。制备好的培养基若不即时使用，

应置于无菌密闭容器中，在2～25℃、避光的环境下保存，并在经验证的保存期内使用。

培养基可按以下处方制备，亦可使用按该处方生产的符合规定的脱水培养基或商品化的

预制培养基。配制后应采用验证合格的灭菌程序灭菌。制备好的培养基若不即时使用，

应置于无菌密闭容器中，在2～25℃环境下保存，并在经验证的保存期内使用。

N.A

1. 硫乙醇酸盐

流体培养基

胰酪胨 15.0g；氯化钠 2.5g；酵母浸出粉 5.0g；新配制的0.1%刃天青溶液 1.0m1；葡萄糖 /

无水葡萄糖 5.5g/5.0g；L-胱氨酸 0.5g；琼脂 0.75g ；硫乙醇酸钠 0.5g；水 1000m1(或硫乙醇

酸)(0.3m1)

胰酪胨 15.0g；氯化钠 2.5g；酵母浸出粉 5.0g；新配制的0.1%刃天青溶液 1.0m1；葡萄糖/

无水葡萄糖 5.5g/5.0g；L-胱氨酸 0.5g；琼脂 0.75g；硫乙醇酸钠 0.5g；水 1000m1(或硫乙醇

酸)(0.3m1)

N.A

除葡萄糖和刃天青溶液外，取上述成分混合，微温溶解，调节pH为弱碱性，煮沸，滤

清，加入葡萄糖和刃天青溶液，摇匀，调节pH，使灭菌后在 25℃的pH值为7.1±0.2。分装

至适宜的容器中，其装量与容器高度的比例应符合培养结束后培养基氧化层（粉红色）

不超过培养基深度的 1/2。灭菌。在供试品接种前，培养基氧化层的高度不得超过培养基

深度的1/3，否则，须经100℃水浴加热至粉红色消失（不超过20分钟），迅速冷却，只限

加热一次，并防止被污染。

取L-胱氨酸、琼脂、氯化钠、葡萄糖、酵母浸出粉和胰酪胨与水混合，加热溶解，加入

硫乙醇酸钠或硫乙醇酸，必要时用 1mol/L 氢氧化钠溶液调节pH,使灭菌后在 25℃的pH值为

7.1±0.2。如需过滤，可重新加热上述溶液，但不得煮沸，趁热过滤。加入刃天青溶液，

混匀，分装至适宜的容器中，其装量与容器高度的比例应符合培养结束后培养基氧化层

（粉红色）不超过培养基深度的 1/2。灭菌。在供试品接种前，培养基氧化层的高度不得

超过培养基深度的 1/3，否则，须经水浴或流通蒸汽加热至粉红色消失（不超过20分

钟），迅速冷却，只限加热一次，并防止被污染。

1.标准化提升：25版明确配方成分，

减少操作歧义。明确列出成分：L-胱

氨酸、琼脂、氯化钠、葡萄糖、酵母

浸出粉、胰酪胨、硫乙醇酸钠或硫乙

醇酸。

2.操作优化：避免过度煮沸导致成分

分解，增强pH调节的精确性。改为“

加热溶解，必要时用 1mol/L氢氧化

钠溶液调节 pH”，未强制要求煮沸，

过滤步骤更灵活。

3.流程简化：减少分步操作，降低污

染风险。在分装前加入刃天青溶

液，无需单独处理葡萄糖。

4.灵活性增强：适应不同实验室条件

。改为“水浴或流通蒸汽加热 ”，提供

更多选择。

除另有规定外，硫乙醇酸盐流体培养基置 30～35℃培养。除另有规定外，硫乙醇酸盐流体培养基置 30～35℃培养。对含有汞类防腐剂，且无法采

用薄膜过滤法处理的供试品，可选用其他经验证的培养体系进行无菌检查。

包容性扩展：覆盖传统方法的局限

性，提升适用性。新增说明：对含汞

类防腐剂且无法薄膜过滤的供试品，

允许使用其他经验证培养体系。

2. 胰酪大豆胨

液体培养基

胰酪胨 17.0g；氯化钠 5.0g；大豆木瓜蛋白酶水解物 3.0g；磷酸氢二钾 2.5g；葡萄糖/无

水葡萄糖 2.5g/2.3g ；水 1000ml

胰酪胨 17.0g；氯化钠 5.0g；大豆木瓜蛋白酶水解物 3.0g；磷酸氢二钾 2.5g；葡萄糖/无

水葡萄糖 2.5g/2.3g；水 1000ml N.A

除葡萄糖外，取上述成分，混合，微温溶解，滤过，调节pH使灭菌后在 25℃的pH值为

7.3±0.2，加入葡萄糖，分装，灭菌。

取上述成分，混合，微温溶解，冷却至室温，用1mol/L 氢氧化钠溶液调节pH使灭菌后在

25℃的pH值为7.3±0.2，必要时滤清，分装，灭菌。

1.操作简化：25版统一溶解所有成

分，减少分步操作，降低污染风险。

未明确排除葡萄糖，可能默认所有成

分（包括葡萄糖）直接混合溶解。

2.精准性提升：冷却后调节 pH可避免

温度对pH值的影响，结果更稳定。

溶解后需“冷却至室温 ”再调节 pH，

随后分装灭菌。

3.灵活性增强：减少不必要的过滤操

作，保留热敏感成分活性。改为“必

要时滤清”，仅在溶液浑浊或有杂质

时过滤。

胰酪大豆胨液体培养基置 20～25℃培养。胰酪大豆胨液体培养基置 20～25℃培养。 N.A

3. 中和或灭活

用培养基

按上述硫乙醇酸盐流体培养基或胰酪大豆胨液体培养基的处方及制法，在培养基灭菌前

或使用前加入适宜的中和剂、灭活剂或表面活性剂，其用量同方法适用性试验。

按上述硫乙醇酸盐流体培养基或胰酪大豆胨液体培养基的处方及制法，在培养基灭菌前

或使用前加入适宜的中和剂、灭活剂或表面活性剂，其用量同方法适用性试验。

N.A

4. 0.5%葡萄糖

肉汤培养基

（用于硫酸链

霉素等抗生素

的无菌检查）

胨 10.0g；氯化钠 5.0g；牛肉浸出粉 3.0g；水 1000ml；葡萄糖 5.0g

除葡萄糖外，取上述成分混合，微温溶解，调节pH 为弱碱性，煮沸，加入葡萄糖溶解

后，摇匀，滤清，调节pH使灭菌后在 25℃的pH值为7.2±0.2，分装，灭菌。

胨 10.0g；氯化钠 5.0g；牛肉浸出粉 3.0g；水 1000ml；葡萄糖 5.0g

除葡萄糖外，取上述成分混合，微温溶解，调节pH 为弱碱性，煮沸，加入葡萄糖溶解

后，摇匀，滤清，调节pH使灭菌后在 25℃的pH值为7.2±0.2，分装，灭菌。

5. 胰酪大豆胨

琼脂培养基

胰酪胨 15.0g；琼脂 15.0g；大豆木瓜蛋白酶水解物 5.0g；水 1000ml；氯化钠 5.0g

除琼脂外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH使灭菌后在 25℃的pH值为7.3±0.2，加

入琼脂，加热溶化后，摇匀，分装，灭菌。

胰酪胨 15.0g；琼脂 15.0g；大豆木瓜蛋白酶水解物 5.0g；水 1000ml；氯化钠 5.0g

除琼脂外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH 使灭菌后在 25℃的pH值为7.3±0.2，加

入琼脂，加热溶化后，摇匀，分装，灭菌。

6. 沙氏葡萄糖

液体培养基

动物组织胃蛋白酶水解物和胰酪胨等量混合物 10.0g；葡萄糖 20.0g；水 1000ml

除葡萄糖外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH 使灭菌后在 25℃的pH值为5.6±0.2，

加入葡萄糖，摇匀，分装，灭菌。

动物组织胃蛋白酶水解物和胰酪胨等量混合物 10.0g；葡萄糖 20.0g；水 1000ml

除葡萄糖外，取上述成分，混合，微温溶解，调节 pH使灭菌后在 25℃ 的pH值为5.6±0.2，

加入葡萄糖，摇匀，分装，灭菌。

7. 沙氏葡萄糖

琼脂培养基

动物组织胃蛋白酶水解物和胰酪胨等量混合物 10.0g；琼脂 15.0g；葡萄糖 40.0g；水

1000ml

除葡萄糖、琼脂外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH使灭菌后在 25℃的pH值为

5.6±0.2，加入琼脂，加热溶化后，再加入葡萄糖，摇匀，分装，灭菌。

动物组织胃蛋白酶水解物和胰酪胨等量混合物 10.0g；琼脂 15.0g；葡萄糖 40.0g；水

1000ml

除葡萄糖、琼脂外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH使灭菌后在 25℃的pH值为

5.6±0.2，加入琼脂，加热溶化后，再加入葡萄糖，摇匀，分装，灭菌。

8. 马铃薯葡萄

糖琼脂培养基

（PDA）

马铃薯（去皮） 200g 琼脂 14.0g

葡萄糖 20.0g 水 1000ml

马铃薯（去皮） 200g 琼脂 15.0g

葡萄糖 20.0g 水 1000ml

琼脂从14g增至15g的调整，主要目的

是通过微调物理性质来提升培养基的

稳定性和实验结果的可靠性。尽管变

化幅度较小，但仍需注意以下两点：

1.对特定微生物的影响：需验证对目

标菌种（如酵母、丝状真菌）的生长

是否产生显著差异。

2.操作适应性：实验室需根据新版配

方优化灭菌和倒板流程，确保培养基

性能符合预期。

取马铃薯，切成小块，加水1000ml，煮沸20～30分钟，用6～8层纱布过滤，取滤液补水

至1000ml，调节pH使灭菌后在 25℃的pH值为5.6±0.2，加入琼脂，加热溶化后，再加入葡

萄糖，摇匀，分装，灭菌。

取马铃薯，切成小块，加水1000ml，煮沸20～30分钟，用6～8层纱布过滤，取滤液补水

至1000ml，调节pH使灭菌后在 25℃的pH值为5.6±0.2，加入琼脂，加热溶化后，再加入葡

萄糖，摇匀，分装，灭菌。

N.A

培养基的适用

性检查

无菌检查用的硫乙醇酸盐流体培养基和胰酪大豆胨液体培养基等应符合培养基的无菌性

检查及灵敏度检查的要求。本检查可在供试品的无菌检查前或与供试品的无菌检查同时

进行。

每批无菌检查用的硫乙醇酸盐流体培养基和胰酪大豆胨液体培养基等应符合培养基的无

菌性检查及灵敏度检查的要求。本检查可在供试品的无菌检查前或与供试品的无菌检查

同时进行。

更规范。

无菌性检查每批培养基一般随机取不少于 5支（瓶），置各培养基规定的温度培养 14天，应无菌生长

。每批随机取部分培养基，置各培养基规定的温度培养 14天，应无菌生长。提高适用性，更灵活。

灵敏度检查

菌种

培养基灵敏度检查所用的菌株传代次数不得超过 5代（从菌种保存中心获得的干燥菌种为

第0代），并采用适宜的菌种保藏技术进行保存和确认，以保证试验菌株的生物学特性。

金黄色葡萄球菌（Staphylococcus aureus）〔CMCC （B）26 003〕

铜绿假单胞菌（Pseudomonas aeruginosa ）〔CMCC （B）10 104〕

枯草芽孢杆菌（Bacillus subtilis ）〔CMCC（B）63 501〕

生孢梭菌（Clostridium sporogenes ）〔CMCC（B）64 941〕

白色念珠菌（Candida albicans ）〔CMCC （F）98 001〕

黑曲霉（Aspergillus niger）〔CMCC （F）98 003〕

培养基灵敏度检查所用的菌株传代次数不得超过 5代（从菌种保存中心获得的干燥菌种为

第0代），并采用适宜的菌种保藏技术进行保存和确认，以保证试验菌株的生物学特性。

金黄色葡萄球菌（Staphylococcus aureus）〔CMCC（B）26 003〕

铜绿假单胞菌（Pseudomonas aeruginosa ）〔CMCC （B）10 104〕

枯草芽孢杆菌（Bacillus subtilis ）〔CMCC（B）63 501〕

生孢梭菌（Clostridium sporogenes ）〔CMCC（B）64 941〕

白色念珠菌（Candida albicans ）〔CMCC （F）98 001〕

黑曲霉（Aspergillus niger）〔CMCC （F）98 003〕

N.A

菌液制备

接种金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、枯草芽孢杆菌的新鲜培养物至胰酪大豆胨液体培

养基中或胰酪大豆胨琼脂培养基上，接种生孢梭菌的新鲜培养物至硫乙醇酸盐流体培养

基中，30～35℃培养 18～24小时；接种白色念珠菌的新鲜培养物至沙氏葡萄糖液体培养

基中或沙氏葡萄糖琼脂培养基上，20～25℃培养2～3天，上述培养物用 pH7.0无菌氯化钠 -

蛋白胨缓冲液或 0.9%无菌氯化钠溶液制成适宜浓度菌悬液。

接种黑曲霉至沙氏葡萄糖琼脂斜面培养基或马铃薯葡萄糖琼脂培养基上，20～25℃培养5

～7天或直到获得丰富的孢子，加入适量含 0.05%（ml/ml）聚山梨酯80的pH7.0无菌氯化

钠-蛋白胨缓冲液或含 0.05%（ml/ml）聚山梨酯 80的0.9%无菌氯化钠溶液，将孢子洗脱。

然后，采用适宜的方法吸出孢子悬液至无菌试管内，用含0.05%（ml/ml）聚山梨酯 80的

pH7.0无菌氯化钠 -蛋白胨缓冲液或含 0.05%（ml/ml）聚山梨酯 80的0.9%无菌氯化钠溶液制

成适宜浓度的孢子悬液。

接种金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、枯草芽孢杆菌的新鲜培养物至胰酪大豆胨液体培

养基中或胰酪大豆胨琼脂培养基上，接种生孢梭菌的新鲜培养物至硫乙醇酸盐流体培养

基中，30～35℃培养18～24小时；接种白色念珠菌的新鲜培养物至沙氏葡萄糖液体培养

基中或沙氏葡萄糖琼脂培养基上，20～25℃培养2～3天，上述培养物用 pH7.0无菌氯化钠 -

蛋白胨缓冲液或 0.9%无菌氯化钠溶液制成适宜浓度菌悬液。

接种黑曲霉至沙氏葡萄糖琼脂斜面培养基或马铃薯葡萄糖琼脂培养基上，20～25℃培养5

～7天或直到获得丰富的孢子，加入适量含 0.05%（g/ml）聚山梨酯80的pH7.0无菌氯化钠 -

蛋白胨缓冲液或含 0.05%（g/ml）聚山梨酯 80的0.9%无菌氯化钠溶液等适宜的稀释液，将

孢子洗脱。采用适宜的方法吸出孢子悬液至无菌试管内，用含0.05%（g/ml）聚山梨酯 80

的pH7.0无菌氯化钠 -蛋白胨缓冲液或含 0.05%（g/ml）聚山梨酯 80的0.9%无菌氯化钠溶液

等适宜的稀释液制成适宜浓度的孢子悬液。

1.单位规范化：更符合国际通行的浓

度表示方式，避免体积与质量混淆。

改为 0.05%（g/ml），表示质量体积

百分比。

2，操作扩展性：为特殊场景（如高

渗透压或特定微生物需求）提供更多

选择。新增“等适宜的稀释液 ”的表

述，允许使用其他经过验证的稀释液

。

菌悬液若在室温下放置，一般应在 2小时内使用；若保存在 2～8℃可在24小时内使用。黑

曲霉孢子悬液可保存在 2～8℃，在验证过的贮存期内使用。

菌悬液若在室温下放置，一般应在 2小时内使用；若保存在 2～8℃可在24小时内使用。黑

曲霉孢子悬液可保存在 2～8℃，在验证过的贮存期内使用。 N.A

培养基接种　取适宜装量的硫乙醇酸盐流体培养基 7支，分别接种不大于 100cfu的金黄色

葡萄球菌、铜绿假单胞菌、生孢梭菌各 2支，另1支不接种作为空白对照；取适宜装量的

胰酪大豆胨液体培养基 7支，分别接种不大于 100cfu的枯草芽孢杆菌、白色念珠菌、黑曲

霉各2支，另1支不接种作为空白对照。接种细菌的培养管培养时间不超过 3天，接种真菌

的培养管培养时间不得超过 5天。

培养基接种　取适宜装量的硫乙醇酸盐流体培养基 7管，分别接种不大于 100cfu的金黄色

葡萄球菌、铜绿假单胞菌、生孢梭菌各 2管，另1管不接种作为空白对照；取适宜装量的

胰酪大豆胨液体培养基 7管，分别接种不大于 100cfu的枯草芽孢杆菌、白色念珠菌、黑曲

霉各2管，另1管不接种作为空白对照。接种细菌的培养基管培养时间不得超过3天，接种

真菌的培养基管培养时间不得超过 5天。

规范描述并统一单位。

结果判定　空白对照管应无菌生长，若加菌的培养基管均生长良好，判该培养基的灵敏

度检查符合规定。

结果判定　空白对照管应无菌生长，若加菌的培养基管均生长良好，判该培养基的灵敏

度检查符合规定。 N.A

稀释液、冲洗

液及其制备方

法

稀释液、冲洗液配制后应采用验证合格的灭菌程序灭菌。

1. 0.1%无菌蛋白胨水溶液　取蛋白胨 1.0g，加水1000ml，微温溶解，必要时滤过使澄清，

调节pH值至7.1±0.2，分装，灭菌。

2. pH7.0 无菌氯化钠 -蛋白胨缓冲液　取磷酸二氢钾 3.56g，无水磷酸氢二钠 5.77g，氯化钠

4.30g，蛋白胨1.00g，加水1000ml，微温溶解，必要时滤过使澄清，分装，灭菌。

根据供试品的特性，可选用其他经验证的适宜溶液作为稀释液或冲洗液（如0.9%无菌氯

化钠溶液）。

如需要，可在上述稀释液或冲洗液的灭菌前或灭菌后加入表面活性剂或中和剂等。

稀释液、冲洗液配制后应采用验证合格的灭菌程序灭菌。

1. 0.1%无菌蛋白胨水溶液　取蛋白胨 1.0g，加水1000ml，微温溶解，必要时滤过使澄清，

调节pH值至7.1±0.2，分装，灭菌。

2. pH7.0 无菌氯化钠 -蛋白胨缓冲液　取磷酸二氢钾 3.56g，无水磷酸氢二钠 5.77g，氯化钠

4.30g，蛋白胨1.00g，加水1000ml，微温溶解，必要时滤过使澄清，分装，灭菌。

根据供试品的特性，可选用其他经验证的适宜溶液作为稀释液或冲洗液（如0.9%无菌氯

化钠溶液）。

如需要，可在上述稀释液或冲洗液的灭菌前或灭菌后加入表面活性剂或中和剂等。

N.A

方法适用性试

验

进行产品无菌检查时，应进行方法适用性试验，以确认所采用的方法适合于该产品的无

菌检查。若检验程序或产品发生变化可能影响检验结果时，应重新进行方法适用性试验

。

方法适用性试验按 "供试品的无菌检查 "的规定及下列要求进行操作。对每一试验菌应逐一

进行方法确认。

进行产品无菌检查时，应进行方法适用性试验，以确认所采用的方法适合于该产品的无

菌检查。若检验程序或产品发生变化可能影响检验结果时，应重新进行方法适用性试验

。

方法适用性试验按 "供试品的无菌检查 "的规定及下列要求进行操作。对每一试验菌应逐一

进行方法确认。

N.A

菌种及菌液制备　金黄色葡萄球菌、枯草芽孢杆菌、生孢梭菌、白色念珠菌、黑曲霉的

菌株及菌液制备同培养基灵敏度检查。大肠埃希菌（Escherichia coli）〔CMCC（B）44

102〕的菌液制备同金黄色葡萄球菌。

菌种及菌液制备　菌株及菌液制备同培养基灵敏度检查。对大肠埃希菌敏感的抗生素类

产品宜选用大肠埃希菌（Escherichia coli）〔CMCC （B）44 102〕代替铜绿假单胞菌，菌

液制备同金黄色葡萄球菌。

1.简化重复内容。

2.新增“对大肠埃希菌敏感的抗生素

类产品宜选用大肠埃希菌 ”的说明。

沿用相同菌液制备方法，但强调敏感

抗生素类产品需优先选择大肠埃希菌

。

薄膜过滤法　按供试品的无菌检查要求，取每种培养基规定接种的供试品总量，采用薄

膜过滤法过滤，冲洗，在最后一次的冲洗液中加入不大于 100cfu 的试验菌，过滤。加培养

基至滤筒内，接种金黄色葡萄球菌、大肠埃希菌、生孢梭菌的滤筒内加硫乙醇酸盐流体

培养基；接种枯草芽孢杆菌、白色念珠菌、黑曲霉的滤筒内加胰酪大豆胨液体培养基。

另取一装有同体积培养基的容器，加入等量试验菌，作为对照。置规定温度培养，培养

时间不得超过 5天。

薄膜过滤法　按供试品的无菌检查要求，取每种培养基规定接种的供试品总量，采用薄

膜过滤法过滤，冲洗，在最后一次的冲洗液中加入不大于 100cfu的试验菌，过滤。加培养

基至滤筒内，接种金黄色葡萄球菌，铜绿假单胞菌 /大肠埃希菌、生孢梭菌的滤筒内加硫

乙醇酸盐流体培养基；接种枯草芽孢杆菌、白色念珠菌、黑曲霉的滤筒内加胰酪大豆胨

液体培养基。另取一装有同体积培养基的容器，加入等量试验菌，作为对照。置规定温

度培养，培养时间不得超过 5天。

和ICH保持一致，将大肠埃希菌替换

为铜绿假单胞菌。

直接接种法　取符合直接接种法培养基用量要求的硫乙醇酸盐流体培养基 6管，分别接入

不大于100cfu的金黄色葡萄球菌、大肠埃希菌、生孢梭菌各 2管；取符合直接接种法培养

基用量要求的胰酪大豆胨液体培养基 6管，分别接入不大于 100cfu的枯草芽孢杆菌、白色

念珠菌、黑曲霉各 2管。其中1管按供试品的无菌检查要求，接入每支培养基规定的供试

品接种量，另1管作为对照，置规定的温度培养，培养时间不得超过 5天。

直接接种法　取符合直接接种法培养基用量要求的硫乙醇酸盐流体培养基 6管，分别接入

不大于100cfu的金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌 /大肠埃希菌、生孢梭菌各 2管；取符合直

接接种法培养基用量要求的胰酪大豆胨液体培养基 6管，分别接入不大于 100cfu的枯草芽

孢杆菌、白色念珠菌、黑曲霉各 2管。其中1管按供试品的无菌检查要求，接入每管培养

基规定的供试品接种量，另1管作为对照，置规定的温度培养，培养时间不得超过 5天。

1.和ICH保持一致，将大肠埃希菌替

换为铜绿假单胞菌。

2.规范统一单位。

结果判断　与对照管比较，如含供试品各容器中的试验菌均生长良好，则说明供试品的

该检验量在该检验条件下无抑菌作用或其抑菌作用可以忽略不计，照此检查方法和检查

条件进行供试品的无菌检查。如含供试品的任一容器中的试验菌生长微弱、缓慢或不生

长，则说明供试品的该检验量在该检验条件下有抑菌作用，应采用增加冲洗量、增加培

养基的用量、使用中和剂或灭活剂、更换滤膜品种等方法，消除供试品的抑菌作用，并

重新进行方法适用性试验。

方法适用性试验也可与供试品的无菌检查同时进行。

结果判断　与对照管比较，如含供试品各容器中的试验菌均生长良好，则说明供试品的

该检验量在该检验条件下无抑菌作用或其抑菌作用可以忽略不计，照此检查方法和检查

条件进行供试品的无菌检查。如含供试品的任一容器中的试验菌生长微弱、缓慢或不生

长，则说明供试品的该检验量在该检验条件下有抑菌作用，应采用增加冲洗量、增加培

养基的用量、使用中和剂或灭活剂、更换滤膜品种等方法，消除供试品的抑菌作用，并

重新进行方法适用性试验。

方法适用性试验也可与供试品的无菌检查同时进行。

N.A

供试品的无菌

检查

无菌检查法包括薄膜过滤法和直接接种法。只要供试品性质允许，应采用薄膜过滤法。

供试品无菌检查所采用的检查方法和检验条件应与方法适用性试验确认的方法相同。

无菌检查法包括薄膜过滤法和直接接种法。只要供试品性质允许，应采用薄膜过滤法，

包括水溶性液体供试品、醇类和油性供试品，或可在水或油性溶剂中溶解的供试品等。

供试品无菌检查所采用的检查方法和检验条件应与方法适用性试验确认的方法相同。

操作指导细化：增强对复杂供试品

（如油性制剂）的适用性指导。明确

列举适用薄膜过滤法的具体供试品类

型（如水溶性液体、醇类、油性供试

品等）。

无菌试验过程中，若需使用表面活性剂、灭活剂、中和剂等试剂，应证明其有效性，且

对微生物无毒性。

无菌试验过程中，若需使用表面活性剂、灭活剂或溶剂等，应证明其有效性，且对微生

物无毒性。

术语规范化：扩大试剂范围（如溶剂

可能包括稀释剂），增强适用性。将

“中和剂”改为“溶剂”，并保留其他试

剂要求。

检验数量　是指一次试验所用供试品最小包装容器的数量，成品每亚批均应进行无菌检

查。除另有规定外，出厂产品按表 1规定；上市产品监督检验按表2规定。表1、表2中最

少检验数量不包括阳性对照试验的供试品用量。

检验数量　是指一次试验所用供试品最小包装容器的数量，成品每亚批均应进行无菌检

查。除另有规定外，批出厂产品及生物制品的原料和半成品最少检验数量按表1规定；上

市产品抽检的最小检验数量按表2规定。

覆盖范围扩展：加强对生物制品生产

全流程的质量控制。新增“生物制品

的原料和半成品 ”的检验数量要求。

新增单剂量包装产品的检验规则

统一标准：单剂量包装产品（如眼药

水、滴鼻剂等）因其无菌要求和风险

与注射剂类似，需采用注射剂级别的

检验标准，确保产品质量与安全性。

覆盖盲区：20版未明确单剂量非注射

产品的检验规则，25版填补了这一空

白，避免监管漏洞

新增批产量未知时的处理规则

风险控制：在批产量无法确认的情况

下（如紧急生产或临时批次），采用

最大批产量对应的检验数量，确保检

验覆盖足够样本，降低漏检风险。

操作明确性：为企业和检验机构提供

明确指导，减少执行中的争议。

供试品的无菌

检查仅修订了表 2的名称

检验量　是指供试品每个最小包装接种至每份培养基的最小量。除另有规定外，供试品

检验量按表 3规定。若每支（瓶）供试品的装量按规定足够接种两种培养基，则应分别接

种硫乙醇酸盐流体培养基和胰酪大豆胨液体培养基。采用薄膜过滤法时，只要供试品特

性允许，应将所有容器内的内容物全部过滤。

检验量　是指供试品每个最小包装接种至每份培养基的最小量。除另有规定外，供试品

的最少检验量按表 3规定。若每支（瓶）供试品的装量按规定足够接种两种培养基，则应

分别接种硫乙醇酸盐流体培养基和胰酪大豆胨液体培养基。采用薄膜过滤法时，只要供

试品特性允许，应将所有容器内的内容物全部过滤。

规范描述

新增了两种供试品类型

1.抗生素液体制剂

2.需混悬或乳化的不溶性制剂、乳膏

剂和软膏剂

阳性对照　应根据供试品特性选择阳性对照菌：无抑菌作用及抗革兰阳性菌为主的供试

品，以金黄色葡萄球菌为对照菌；抗革兰阴性菌为主的供试品以大肠埃希菌为对照菌；

抗厌氧菌的供试品，以生孢梭菌为对照菌；抗真菌的供试品，以白色念珠菌为对照菌。

阳性对照试验的菌液制备同方法适用性试验，加菌量不大于 100cfu，供试品用量同供试品

无菌检查时每份培养基接种的样品量。阳性对照管培养不超过 5天，应生长良好。

N.A

灵活性提升：删除阳性对照实验的硬

性要求，从“一刀切 ”转向基于风险的

动态管理，减少冗余操作。

阴性对照　供试品无菌检查时，应取相应溶剂和稀释液、冲洗液同法操作，作为阴性对

照。阴性对照不得有菌生长。

阴性对照　供试品无菌检查时，应取相应溶剂和稀释液、冲洗液同法操作，作为阴性对

照。阴性对照不得有菌生长。 N.A

N.A

实验室应基于质量风险管理的要求，根据产品特性、方法适用性试验结果，人员技能与

经验、数据可靠性、污染控制措施和实验室质量控制水平等因素，综合评估确定日常检

验过程中阳性对照试验的必要性，频次及其他要求。阳性对照试验方法同供试品检查，

加菌量不大于 100cfu,阳性对照管培养不得超过 5天，应生长良好。

引入质量风险管理，允许实验室综合

评估阳性对照的必要性、频次及要求

。

供试品处理及接种培养基

操作时，用适宜的方法对供试品容器表面进行彻底消毒，如果供试品容器内有一定的真

空度，可用适宜的无菌器材（如带有除菌过滤器的针头）向容器内导入无菌空气，再按

无菌操作启开容器取出内容物。

除另有规定外，按下列方法进行供试品处理及接种培养基。

供试品处理及接种培养基

操作时，用适宜的方法对供试品容器表面进行彻底消毒，如果供试品容器内有一定的真

空度，可用适宜的无菌器材（如带有除菌过滤器的针头）向容器内导入无菌空气，再按

无菌操作开启容器取出内容物。

除另有规定外，按下列方法进行供试品处理及接种培养基。

表述标准化：统一术语，减少歧义。

改为“开启容器”。

1. 薄膜过滤法

薄膜过滤法一般应采用封闭式薄膜过滤器，根据供试品及其溶剂的特性选择滤膜材质。

无菌检查用的滤膜孔径应不大于 0.45μm。滤膜直径约为 50mm，若使用其他尺寸的滤膜，

应对稀释液和冲洗液体积进行调整，并重新验证。使用时，应保证滤膜在过滤前后的完

整性。

水溶性供试液过滤前，一般应先将少量的冲洗液过滤，以润湿滤膜。油类供试品，其滤

膜和过滤器在使用前应充分干燥。为发挥滤膜的最大过滤效率，应注意保持供试品溶液

及冲洗液覆盖整个滤膜表面。供试液经薄膜过滤后，若需要用冲洗液冲洗滤膜，每张滤

膜每次冲洗量一般为 100ml，总冲洗量一般不超过 500ml，最高不得超过 1000ml，以避免

滤膜上的微生物受损伤。

根据供试品及其溶剂的特性选择滤膜材质，应充分考虑供试品的亲水性、疏水性及其他

产品特性（如抗生素）的影响。无菌检查用的滤膜孔径应不大于 0.45μm。滤膜直径约为

50mm，若使用其他尺寸的滤膜，应对稀释液和冲洗液体积进行调整，并重新验证。使用

时，应保证滤膜在过滤前后的完整性及过滤系统的无菌性。为发挥滤膜的最大过滤效

率，应注意保持供试品溶液及冲洗液覆盖整个滤膜表面。

全面性提升：强调过滤系统（包括滤

器、管路等）的无菌性，降低污染风

险。新增“应保证滤膜在过滤前后的

完整性及过滤系统的无菌性 ”。

水溶性液体供试品　取规定量，直接过滤，或混合至含不少于 100ml适宜稀释液的无菌容

器中，混匀，立即过滤。如供试品具有抑菌作用，须用冲洗液冲洗滤膜，冲洗次数一般

不少于三次，所用的冲洗量、冲洗方法同方法适用性试验。除生物制品外，一般样品冲

洗后，1份滤器中加入 100ml硫乙醇酸盐流体培养基，1份滤器中加入 100ml胰酪大豆胨液

体培养基。生物制品样品冲洗后，2份滤器中加入 100ml硫乙醇酸盐流体培养基，1份滤器

中加入100ml胰酪大豆胨液体培养基。

水溶性液体供试品　取规定量，直接过滤，或混合至含不少于 100ml适宜稀释液的无菌容

器中，混匀，立即过滤。适用时，水溶性供试液过滤前先将少量的冲洗液过滤，以润湿

滤膜。如供试品具有抑菌作用，须用冲洗液冲洗滤膜，冲洗次数一般不少于三次，所用

的冲洗量、冲洗方法同方法适用性试验。但即使方法适用性试验证实该方法未能完全消

除抑菌性，每张滤膜冲洗一般也不得超过 5次。每次冲洗量为 100ml，冲洗后，1份滤器加

入硫乙醇酸盐流体培养基，1份滤器中加入胰酪大豆胨液体培养基。所用培养基的体积与

方法适用性相同。

操作严格性：避免过度冲洗导致微生

物损伤，提高结果可靠性。新增“每

张滤膜冲洗一般不得超过 5次”，即使

方法适用性试验显示需要更多冲洗。

水溶性固体和半固体供试品　取规定量，加适宜的稀释液溶解或按标签说明复溶，然后

照水溶性液体供试品项下的方法操作。

水溶性固体和半固体供试品　取规定量，加适宜的稀释液溶解，如使用供试品所附溶剂

、注射用水，0.9%无菌氯化钠溶液或 0.1%无菌蛋白胨水溶液，照水溶性液体供试品项下

的方法操作。

标准化增强：减少操作差异，确保溶

解效果一致性。明确稀释液类型（如

注射用水、0.9%无菌氯化钠溶液、

0.1%无菌蛋白胨水溶液）。

非水溶性供试品　取规定量，直接过滤；或混合溶于适量含聚山梨酯 80或其他适宜乳化

剂的稀释液中，充分混合，立即过滤。用含0.1%～1%聚山梨酯80的冲洗液冲洗滤膜至少3

次。加入含或不含聚山梨酯 80的培养基。接种培养基照水溶性液体供试品项下的方法操

作。

非水溶性供试品　取规定量，直接过滤；或混合溶于适量含聚山梨酯 80或其他适宜乳化

剂的稀释液中，充分混合，立即过滤。用含0.1%～1%聚山梨酯80的冲洗液冲洗滤膜不得

少于3次。加入含或不含聚山梨酯 80的培养基。照水溶性液体供试品项下的方法操作，油

类供试品，其滤膜和过滤器在使用前应充分干燥。

逻辑优化：将油类预处理与操作步骤

关联，避免遗漏。新增“油类供试

品，其滤膜和过滤器在使用前应充分

干燥”并调整至非水溶性供试品项下

。

可溶于十四烷酸异丙酯的膏剂和黏性油剂供试品　取规定量，混合至适量的无菌十四烷

酸异丙酯(0)中，剧烈振摇，使供试品充分溶解，如果需要可适当加热，加热温度一般不

超过40℃，最高不得超过 44℃，趁热迅速过滤。对仍然无法过滤的供试品，于含有适量

的无菌十四烷酸异丙酯中的供试液中加入不少于 100ml的适宜稀释液，充分振摇萃取，静

置，取下层水相作为供试液过滤。过滤后滤膜冲洗及接种培养基照非水溶性制剂供试品

项下的方法操作。

可溶于十四烷酸异丙酯的膏剂和黏性油剂供试品　取规定量，混合至适量的无菌十四烷

酸异丙酯 (0)中，剧烈振摇，使供试品充分溶解，如果需要可适当加热，加热温度一般不

得超过40℃，最高不得超过 44℃，趁热迅速过滤。对仍无法过滤的供试品，于含有适量

的无菌十四烷酸异丙酯中的供试液中加入不少于 100ml的适宜稀释液，充分振摇萃取，静

置，取下层水相作为供试液过滤。过滤后滤膜冲洗及接种培养基照水溶性液体供试品或

非水溶性供试品项下的方法操作。

规范描述及分类。

无菌气雾剂供试品　取规定量，采用专用设备将供试品转移至封闭式薄膜过滤器中。或

将各容器置 -20℃或其他适宜温度冷冻约 1小时，取出，迅速消毒供试品开启部位或阀门，

正置容器，用无菌钢锥或针样设备以无菌操作迅速在与容器阀门结构相匹配的适宜位置

钻一小孔，不同容器钻孔大小和深度应保持基本一致，钻孔后应无明显抛射剂抛出，轻

轻转动容器，使抛射剂缓缓释出，释放抛射剂后再无菌开启容器，并将供试液转移至无

菌容器中混合，必要时用冲洗液冲洗容器内壁。供试品亦可采用其他适宜的方法取出。

然后照水溶性液体供试品或非水溶性供试品项下的方法操作。

无菌气雾剂供试品　取规定量，采用专用设备将供试品转移至封闭式薄膜过滤器中。或

将各容器置 -20℃或其他适宜温度冷冻约 1小时，取出，迅速消毒供试品开启部位或阀门，

正置容器，用无菌钢锥或针样设备以无菌操作迅速在与容器阀门结构相匹配的适宜位置

钻一小孔，不同容器钻孔大小和深度应保持基本一致，钻孔后应无明显抛射剂抛出，轻

轻转动容器，使抛射剂缓缓释出，释放抛射剂后再无菌开启容器，并将供试液转移至无

菌容器中混合，必要时用冲洗液冲洗容器内壁。供试品亦可采用其他适宜的方法取出。

照水溶性液体供试品或非水溶性供试品项下的方法操作。

简化描述。

装有药物的注射器供试品　取规定量，将注射器中的内容物（若需要可吸入稀释液或标

签所示的溶剂溶解）直接过滤，或混合至含适宜稀释液的无菌容器中，然后照水溶性液

体或非水溶性供试品项下方法操作。同时应采用适宜的方法对包装中所配带的针头等要

求无菌的部件进行无菌检查。

装有药物的注射器供试品　取规定量，将注射器中的内容物（若需要可用稀释液或标签

所示的溶剂溶解）直接过滤，或混合至含适宜稀释液的无菌容器中，照水溶性液体供试

品或非水溶性供试品项下方法操作。同时应采用适宜的方法对包装中所配带的针头等要

求无菌的部件进行无菌检查。

扩大操作形式，不再局限于 “吸入”操

作。

规范描述。

具有导管的医疗器械（输血、输液袋等）供试品　除另有规定外，取规定量，每个最小

包装用适量的（通常50～100ml）冲洗液分别冲洗内壁，收集冲洗液于无菌容器中，然后

照水溶性液体供试品项下方法操作。同时应采用适宜的方法对包装中所配带的针头等要

求无菌的部件进行无菌检查。

标示通路无菌的医疗器械（输血、输液袋等）供试品　除另有规定外，取规定量，每个

最小包装用适量的（通常50～100ml）冲洗液分别冲洗内壁，收集冲洗液于无菌容器中，

照水溶性液体供试品项下方法操作。同时应采用适宜的方法对包装中所配带的针头等要

求无菌的部件进行无菌检查。

术语规范化：强调医疗器械的通路无

菌特性，与行业术语接轨。改为“标

示通路无菌的医疗器械（输血、输液

袋等）”。

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标签： #无菌 #无菌检查法 #2025版药典

摘要：

取消新增修订《中国药典》1101无菌检查法：2020年版VS2025年版对比表标题2020年版2025年版对比分析前言无菌检查应在无菌条件下进行，试验环境必须达到无菌检查的要求，检验全过程应严格遵守无菌操作，防止微生物污染，防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检出。单向流空气区域、工作台面及受控环境应定期按医药工业洁净室（区）悬浮粒子、浮游菌和沉降菌的测试方法的现行国家标准进行洁净度确认。隔离系统应定期按相关的要求进行验证，其内部环境的洁净度须符合无菌检查的要求。日常检验需对试验环境进行监测。无菌检查应在无菌条件下进行，试验环境必须达到无菌检查的要求，检验全过程应严格遵守无菌操作，防止微生物...

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